Инструкция к набору LumiSpin®️ UNI для выделения ДНК на спин-колонках из любых биообразцов

Набор предназначен для быстрого (~ 30 минут) и высокоэффективного выделения геномной ДНК на спин-колонках из широкого спектра образцов: тканей растений и животных, буккального эпителия, цельной крови, лейкоцитов, культур клеток животных и грам-отрицательных бактерий. Полученная ДНК стабильна и подходит для проведения ПЦР, обработки эндонуклеазами рестрикции, Саузерн-блоттинга, подготовки образцов для секвенирования по методу Сэнгера и NGS-секвенирования.

Ориентировочные выходы геномной ДНК (длина 30–50 тыс. пар нуклеотидов, OD₂₆₀/OD₂₈₀ 1.7–1.8):

Клетки грам-отрицательных бактерий (10⁸): 5–10 мкг
Лист растения, хвоя (50 мг): 3–5 мкг
Хвост мыши: 7–14 мкг
Почка мыши: 10–20 мкг
Сердце мыши: 7–14 мкг
Печень мыши: 10–15 мкг
Лейкоциты, выделенные из 1 мл крови: 4–5 мкг
Цельная кровь (100 мкл): 1–3 мкг
Соскоб буккального эпителия: 0.5–2 мкг
Клетки млекопитающих (1×10⁶): 3–6 мкг

Состав набора

Компонент набора	Количество
Компонент набора	11573 10 minipreps	21573 50 minipreps	31573 100 minipreps
12164, Spin column (up to 20 µg), 10 pcs	1	—	—
H1850, Лизирующий раствор AS / Lysis Solution AS, 6 mL	1	—	—
F5450, Сорбирующий раствор / Sorption Solution, 4 mL	1	—	—
H2450, Промывочный раствор A / Wash Solution A (с GuHCl), 6 mL	1	—	—
K3150, Буфер для лизиса эритроцитов / Red Blood Cell Lysis Buffer 10x, 10 mL	1	—	—
11650, РНКаза A (10 mg/mL), 50 uL	1	—	—
1902-5g, Корунд (50 мкм), 5 g	1	—	—
P1850, Лизирующий раствор AS / Lysis Solution AS, 30 mL	—	1	—
M5450, Сорбирующий раствор / Sorption Solution, 20 mL	—	1	—
P2450, Промывочный раствор A / Wash Solution A (с GuHCl), 30 mL	—	1	—
S3150, Буфер для лизиса эритроцитов / Red Blood Cell Lysis Buffer 10x, 50 mL	—	1	—
1902-25g, Корунд (50 мкм), 25 g	—	1	—
31650, РНКаза A (10 mg/mL), 150 uL	—	2	—
T1850, Лизирующий раствор AS / Lysis Solution AS, 60 mL	—	—	1
R5450, Сорбирующий раствор / Sorption Solution, 40 mL	—	—	1
T2450, Промывочный раствор A / Wash Solution A (с GuHCl), 60 mL	—	—	1
M2250, Промывочный раствор B / Wash Solution B (концентрат 5x для разбавления 96% этанолом), 20.0 mL	—	—	1
D3850, Буфер для растворения протеиназы К / Proteinase K Dilution Buffer, 1200 uL	—	—	1
32850, Протеиназа К / Proteinase К (лиофилизованная), 12.0 mg	—	—	1
1902-50g, Корунд (50 мкм), 50 g	—	—	1
U3150, Буфер для лизиса эритроцитов / Red Blood Cell Lysis Buffer 10x, 100 mL	—	—	1
51650, РНКаза A (10 mg/mL), 300 uL	—	—	2
Пробирка для сбора проскока, 2 мл	30	150	300
Пестик для микроцентрифужной пробирки (полипропилен)	10	50	100
K2250, Промывочный раствор B / Wash Solution B (концентрат 5x для разбавления 96% этанолом), 10.0 mL	1	1	—
D1350, Элюирующий буфер / Elution Buffer (10 мМ Tris-HCl, pH 8.5), 1.5 mL	1	4	8
12850, Протеиназа К / Proteinase К (лиофилизованная), 6.0 mg	1	1	—
B3850, Буфер для растворения протеиназы К / Proteinase K Dilution Buffer, 600 uL	1	1	—
22164, Spin column (up to 20 µg), 50 pcs	—	1	2

Хранить при температуре 20°С.

Срок хранения 12 месяцев.

Необходимое оборудование и материалы, не входящие в состав набора:

Твердотельный термостат (возможно использование водяной бани);
Настольная центрифуга с ротором для 1.5 мл пробирок со скоростью вращения не менее 10000 об/мин (6700 x g);
Микроцентрифужные пробирки объемом 1.5 мл (2 пробирки для выделения ДНК из 1 образца);
96 % этанол;
Натрий-фосфатный буфер (PBS) для выделения ДНК из клеток млекопитающих и бактерий, лейкоцитов;
Фарфоровая ступка для гомогенизации образца при выделении ДНК из тканей растений и животных (в случае если пестик-гомогенизатор не подходит для гомогенизации образца);
(опционально) Центрифуга с ротором для 15 мл пробирок со скоростью вращения не менее 300 x g для выделения ДНК из лейкоцитов и клеток млекопитающих.

Перед началом работы

Разбавьте концентрат промывочного раствора B в 5 раз 96 % этанолом (к указанному на банке объему концентрата добавьте 4 объема 96 % этанола), поставьте отметку о добавлении этанола на крышке.
Добавьте 600 мкл буфера для растворения протеиназы К в пробирку с лиофилизованной протеиназой К, тщательно перемешайте, сбросьте капли центрифугированием.
! Раствор протеиназы К после приготовления хранить в морозилке при −20 °С.
При наличии осадка в сорбирующем растворе и промывочном растворе А прогрейте их в термостате до температуры не выше 50 °С и дождитесь полного растворения осадка.

Работы следует выполнять при комнатной температуре, все центрифугирования (если иное прямо не оговорено) при 10000–13000 об/мин (6700–11000 x g).

Выделение ДНК из тканей растений и животных

В качестве образца для выделения ДНК рекомендуется брать 20–40 мг ткани животного и 50–100 мг ткани растения.

(А) В случае использования пестика-гомогенизатора (входит в состав набора):
1. Поместите в 1.5 мл пробирку кусочек ткани.
2. Добавьте к образцу
  - 200 мкл лизирующего раствора AS,
  - 70–100 мг корунда.
3. Гомогенизируйте образец с помощью пестика-гомогенизатора.
4. Добавьте к гомогенату еще 300 мкл лизирующего раствора AS. Перемешайте.

(Б) В случае использования фарфоровой ступки (не входит в состав набора):
1. В ступку поместите кусочек ткани.
2. Добавьте к образцу
  - 100 мкл деионизованной воды,
  - 200 мкл лизирующего раствора AS,
  - 300–500 мг корунда
3. Гомогенизируйте образец в ступке.
4. Добавьте в гомогенату еще 300 мкл лизирующего раствора AS, перемешайте.
5. Перенесите смесь в 1.5 мл пробирку.

(В) Приготовления лизата образцов тканей животных (хвоста мыши и других) без гомогенизации:
1. Поместите в 1.5 мл пробирку кусочек ткани,
2. Добавьте к образцу 500 мкл лизирующего раствора AS.
Установите термостат на 55 °С, поместите в него пробирку с элюирующим буфером.
Добавьте к образцу
- 5 мкл раствора РНКазы,
- 10 мкл раствора протеиназы К,
Перемешайте.
Для 1 (А) и 1 (Б): инкубируйте полученную смесь 20 мин при +55 °С, периодически перемешивая на вортексе (1–2 раза),
Для 1 (В): инкубируйте полученную смесь при +55 °С до полного завершения лизиса образца (1–4 часа для небольших кусочков органов и тканей с периодическим перемешиванием на вортексе, инкубация в течение ночи для хвоста мыши и других крупных кусочков органов и тканей. В лизате допустимо присутствие компонентов (волосы, кости и хрящи), не подвергающихся лизису таким способом).
Добавьте к образцу 350 мкл сорбирующего раствора. Перемешайте полученную смесь на вортексе до гомогенного состояния.
Центрифугируйте образец в течение 10 мин.
Поместите колонку в пробирку для сбора проскока, перенесите на колонку супернатант (не более 800 мкл), центрифугируйте 60 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора A, центрифугируйте 30 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора B, центрифугируйте 3 мин.
Поместите колонку в новую 1.5 мл пробирку, нанесите в центр колонки 50–100 мкл предварительно прогретого до +55 °С элюирующего буфера. Инкубируйте 1 мин при комнатной температуре. Центрифугируйте 60 сек. Выделенная ДНК находится в элюате.

Выделение ДНК из соскоба буккального эпителия

Установите термостат на 55 °С, поместите в него пробирку с элюирующим буфером.
Внесите в 1.5 мл пробирку 500 мкл лизирующего раствора AS. Тщательно промойте в лизирующем растворе AS палочку с соскобом буккального эпителия. Прижмите к стенке ватный тампон и вращательным движением отожмите из него остатки лизирующего раствора.
Добавьте в пробирку 10 мкл раствора протеиназы К, перемешайте.
Инкубируйте полученную смесь 10 мин при +55 °С, периодически перемешивая на вортексе (1–2 раза).
Добавьте к образцу 300 мкл сорбирующего раствора. Перемешайте полученную смесь на вортексе до гомогенного состояния.
Поместите колонку в пробирку для сбора проскока, перенесите на колонку лизат, центрифугируйте 45 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора A, центрифугируйте 30 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора B, центрифугируйте 3 мин.
Поместите колонку в новую 1.5 мл пробирку, нанесите в центр колонки 50–100 мкл предварительно прогретого до +55 °С элюирующего буфера. Инкубируйте 1 мин при комнатной температуре. Центрифугируйте 60 сек. Выделенная ДНК находится в элюате.

Выделение ДНК из цельной крови

Данный набор позволяет выделить ДНК из 100 мкл цельной крови (свежая или замороженная кровь, содержащая в качестве антикоагулянта ЭДТА, цитрат натрия, гепарин). Перемешайте переворачиванием пробирку с кровью, чтобы содержимое пробирки стало гомогенным, после чего отберите 100 мкл образца в отдельную 1.5 мл пробирку.

Установите термостат на 55 °С, поместите в него пробирку с элюирующим буфером.
Смешайте в 1.5 мл пробирке 100 мкл цельной крови и 400 мкл лизирующего раствора AS.
Добавьте в пробирку 10 мкл раствора протеиназы К, перемешайте.
Инкубируйте полученную смесь 10 мин при +55 °С, периодически перемешивая на вортексе (1–2 раза).
Добавьте к образцу 300 мкл сорбирующего раствора. Перемешайте полученную смесь на вортексе до гомогенного состояния.
Поместите колонку в пробирку для сбора проскока, перенесите на колонку лизат, центрифугируйте 45 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора A, центрифугируйте 30 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора B, центрифугируйте 3 мин.
Поместите колонку в новую 1.5 мл пробирку, нанесите в центр колонки 50–100 мкл предварительно прогретого до +55 °С элюирующего буфера. Инкубируйте 1 мин при комнатной температуре. Центрифугируйте 60 сек. Выделенная ДНК находится в элюате.

Выделение ДНК из лейкоцитов

Предварительное выделение лейкоцитов обеспечивает более высокий выход ДНК по сравнению с выделением ДНК из цельной крови. Рекомендуемый объём цельной крови для выделения лейкоцитов — 1 мл.

Для выделения лейкоцитов из 1 мл цельной крови приготовьте 9 мл 1х буфера для лизиса эритроцитов: в 15 мл пробирке смешайте 900 мкл 10х буфера для лизиса эритроцитов и 8.1 мл деионизованной воды.
Установите термостат на 55 °С, поместите в него пробирку с элюирующим буфером.
В 15 мл пробирке смешайте 1 мл цельной крови и 9 мл 1х буфера для лизиса эритроцитов, перемешайте и инкубируйте 5 мин при комнатной температуре.
Центрифугируйте пробирку 5 мин, 300 x g, надосадочную жидкость слейте, лейкоциты находятся в осадке.
Ресуспендируйте осадок клеток в 100 мкл PBS. Перенесите суспензию в новую 1.5 мл пробирку.
Добавьте в пробирку
- 400 мкл лизирующего раствора AS,
- 5 мкл раствора РНКазы,
- 10 мкл раствора протеиназы К,
Перемешайте.
Инкубируйте полученную смесь 10 мин при +55 °С, периодически перемешивая на вортексе (1–2 раза).
Добавьте к образцу 300 мкл сорбирующего раствора. Перемешайте полученную смесь на вортексе до гомогенного состояния.
Поместите колонку в пробирку для сбора проскока, перенесите на колонку лизат, центрифугируйте 45 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора A, центрифугируйте 30 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора B, центрифугируйте 3 мин.
Поместите колонку в новую 1.5 мл пробирку, нанесите в центр колонки 50–100 мкл предварительно прогретого до +55 °С элюирующего буфера. Инкубируйте 1 мин при комнатной температуре. Центрифугируйте 60 сек. Выделенная ДНК находится в элюате.

Выделение ДНК из культур клеток животных и бактерий

Для выделения ДНК рекомендуется брать не более 5×10⁶ животных клеток и 10⁹ клеток грам-отрицательных бактерий.

Адгезионная культура клеток животных: удалите культуральную жидкость, снимите культуру клеток с поверхности пластика трипсином или другим рекомендованным для данной культуры методом. Центрифугируйте клетки 5 мин, 300 x g. Удалите супернатант. Ресуспендируйте находящиеся в осадке клетки в 100 мкл PBS. Перенесите суспензию клеток в новую 1.5 мл пробирку.

Суспензионная культура клеток животных: отберите объём культуральной жидкости, содержащий необходимое число клеток. Центрифугируйте клетки 5 мин, 300 x g. Удалите супернатант. Ресуспендируйте находящиеся в осадке клетки в 100 мкл PBS. Перенесите суспензию клеток в новую 1.5 мл пробирку.

Бактериальная культура: бактерии, выращенные на твердой или жидкой питательной среде, соберите центрифугированием в течение 5–10 минут, 3000–5000 x g. Удалите супернатант. Ресуспендируйте находящиеся в осадке клетки в 100 мкл PBS. Перенесите суспензию клеток в новую 1.5 мл пробирку.

Установите термостат на 55 °С, поместите в него пробирку с элюирующим буфером.
Добавьте в пробирку с образцом
- 400 мкл лизирующего раствора AS,
- 5 мкл раствора РНКазы,
- 10 мкл раствора протеиназы К,
Перемешайте.
Инкубируйте полученную смесь 10 мин при +55 °С, периодически перемешивая на вортексе (1–2 раза).
Добавьте к образцу 300 мкл сорбирующего раствора. Перемешайте полученную смесь на вортексе до гомогенного состояния.
Поместите колонку в пробирку для сбора проскока, перенесите на колонку лизат, центрифугируйте 45 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора A, центрифугируйте 30 сек. Поместите колонку в новую пробирку для сбора проскока.
Нанесите на колонку 500 мкл промывочного раствора B, центрифугируйте 3 мин.
Поместите колонку в новую 1.5 мл пробирку, нанесите в центр колонки 50–100 мкл предварительно прогретого до +55 °С элюирующего буфера. Инкубируйте 1 мин при комнатной температуре. Центрифугируйте 60 сек. Выделенная ДНК находится в элюате.

Примечание

Для получения наибольшей концентрации ДНК используйте меньшие объёмы элюирующего буфера. Не рекомендуется использовать менее 50 мкл, так как мембрана колонки может не полностью смочиться, что приведет к снижению выхода ДНК. Для наибольшего выхода ДНК с колонки используйте больший объём элюирующего буфера (100 мкл).

Элюция ДНК прогретым до +55 °С элюирующим буфером обеспечивает оптимальный выход ДНК с колонки. Элюция непрогретым элюирующим буфером (при комнатной температуре) также допустима, однако это заметно снижает выход ДНК (на 30–50 %).

Для максимального выхода ДНК рекомендуется проводить элюцию в два этапа.

При необходимости элюция может проводиться деионизованной водой.

Если необходимо разбавить раствор при измерении концентрации ДНК, то для разбавления следует использовать только буфер ТЕ pH 8.5 или элюирующий буфер из набора. В противном случае можно получить некорректные значения OD₂₆₀/OD₂₈₀ и неверно определить содержание ДНК в растворе.

Хранение выделенной ДНК: в морозильной камере (−20 °С), кратковременно при +4 °С.

Наборы

LumiSpin® UNI, набор для выделения ДНК на спин-колонках из любых биообразцов

Набор для выделения геномной ДНК с высокой степенью очистки из тканей и органов растений и животных, цельной крови, лейкоцитов, буккального эпителия, культур клеток млекопитающих и грам-отрицательных бактерий.

Показать цены