Общие свойства

Вид продукта: фиолетовое твердое вещество / раствор
Инкремент массы молекулярного иона: 512.2
Молекулярная масса: 512.56
CAS-номер: 1192590-89-8
Брутто-формула: C28H28N6O4
Растворимость: хорошая в полярных органических растворителях (DMF, DMSO, спиртах), низкая в воде
Контроль качества: ЯМР 1H, ВЭЖХ-МС (95%)
Условия хранения: Хранение: 24 месяца (с момента доставки) при -20°C в темноте. Транспортировка: до трех недель при комнатной температуре. Избегайте хранения на свету. Берегите от влаги.

Спектры поглощения и эмиссии TAMRA азид, 6-изомер

Максимум возбуждения/поглощения, нм:541
ε, л⋅моль⁻¹⋅см⁻¹:84000
Длина волны флуоресценции, нм:567
Квантовый выход флуоресценции:0.1
CF260:0.32
CF280:0.19
Таблица флуоресцентных меток
В наличии
$125.00
АРТИКУЛФАСОВКАЦЕНАСРОК ПОСТАВКИКУПИТЬ ТОВАР
A8130
1 mg
$125.00
В наличии
B8130
5 mg
$199.90
В наличии
C8130
10 mg
$299.90
В наличии
D8130
25 mg
$559.90Бесплатная доставка при заказе от $400.00
В наличии
E8130
50 mg
$749.90Бесплатная доставка при заказе от $400.00
В наличии
F8130
100 mg
$1 190.00Бесплатная доставка при заказе от $400.00
В наличии

Тетраметилродамин (TAMRA) - ксантеновый краситель с эмиссией в оранжевой области. Этот краситель является FRET-акцептором для флуоресцеина (FAM) и иногда используется как тушитель для него.

TAMRA, как и другие ксантены, существует в виде двух изомеров (5- и 6-), обладающих очень близкими спектральными свойствами. Этот азид - производное 6-TAMRA. Его можно конъюгировать с терминальными алкинами с помощью медь-катализируемой реакции клик-химии (CuААЦ) , а также с напряженными циклоалкинами (например, циклооктинами) по реакции стерически промотируемого алкин-азидного циклоприсоединения (СПААЦ).

Цитирования (17)

  • Puthenveetil, R.; Lun, C.M.; Murphy, R.E.; Healy, L.B.; Vilmen, G.; Christenson, E.T.; Freed, E.O.; Banerjee, A.. "S-acylation of SARS-CoV-2 Spike Protein: Mechanistic Dissection, In Vitro Reconstitution and Role in Viral Infectivity". Journal of Biological Chemistry (2021), 297(4): 101112
    DOI: 10.1016/j.jbc.2021.101112
  • Petrunina, N.A.; Lebedev, V.V.; Kirillova, Y.G.; Aralov, A..V.; Varizhuk, A.M.; Sardushkin, M.V.. "DNA Intercalated Motifs with Non-Nucleoside Inserts". Russian Journal of Bioorganic Chemistry (2021), 47(6): 1341–1344
    DOI: 10.1134/S1068162021060212
  • Xu, Y.; Deng, Z.; Shi, Y.; Chen, X.; Xu, J.; Zhong, S.; Xiao, Y.; Wong, N.-K.; Zhou, Y.. "Molecular Imaging and In Situ Quantitative Profiling of Fatty Acid Synthase with a Chemical Probe". Analytical Chemistry (2020), 92(6): 4419–4426
    DOI: 10.1021/acs.analchem.9b05327
  • Chen, X.; Xu, J.; Wong, N.-K.; Zhong, S.; Yang, M.; Liu, Z.; Lu, Y.; Li, W.; Zhou, Y.. "Chemoproteomic profiling of cobalamin-independent methionine synthases in plant with a covalent probe". Journal of Agricultural and Food Chemistry (2020), 68(30): 8050–8056
    DOI: 10.1021/acs.jafc.0c03301
  • Tang, G.; Liu, L.; Wang, X.; Pan, Z.. "Discovery of 7H-pyrrolo[2,3-d]pyrimidine derivatives as selective covalent irreversible inhibitors of interleukin-2-inducible T-cell kinase (Itk)". European Journal of Medicinal Chemistry (2019), 173: 167–183
    DOI: 10.1016/j.ejmech.2019.03.055
  • Zhang, S.; Spiegelman, N.A.; Lin, H.. "Global Profiling of Sirtuin Deacylase Substrates Using a Chemical Proteomic Strategy and Validation by Fluorescent Labeling". Methods in Molecular Biology (2019), 2009: 137–147
    DOI: 10.1007/978-1-4939-9532-5_11
  • Nemmara, V.J.; Subramanian, V.; Muth, A.; Mondal, S.; Salinger, A.J.; Maurais, A.J.; Tilvawala, R.; Weerapana, E.; Thompson, P.R.. "The Development of Benzimidazole-Based Clickable Probes for the Efficient Labeling of Cellular Protein Arginine Deiminases (PADs)". ACS Chemical Biology (2018), 13(3): 712–722
    DOI: 10.1021/acschembio.7b00957
  • Li, W.; Zhou, Y.; Tang, G.; Wong, N.-K.; Yang, M.; Tan, D.; Xiao, Y.. "Chemoproteomics Reveals the Anti-proliferative Potential of Parkinson's Disease Kinase Inhibitor LRRK2-IN-1 by Targeting PCNA Protein". Molecular Pharmaceutics (2018), 15(8): 3252–3259
    DOI: 10.1021/acs.molpharmaceut.8b00325
  • Eelen, G.; Dubois, C.; Cantelmo, A.R.; Goveia, J.; Brüning, U.; DeRan, M.; Jarugumilli, G.; van Rijssel, J.; Saladino, G.; Comitani, F.; Zecchin, A.; Rocha, S.; Chen, R.; Huang, H.; Vandekeere, S.; Kalucka, J.; Lange, C.; Morales-Rodriguez, F.; Cruys, B.; Treps, L.; Ramer, L.; Vinckier, S.; Brepoels, K.; Wyns, S.; Souffreau, J.; Schoonjans, L.; Lamers, W.H.; Wu, Y.; Haustraete, J.; Hofkens, J.; Liekens, S.; Cubbon, R.; Ghesquière, B.; Dewerchin, M.; Gervasio, F.L.; Li, X.; van Buul, J.D.; Wu, X.; Carmeliet, P.. "Role of glutamine synthetase in angiogenesis beyond glutamine synthesis". Nature (2018), 561(7721): 63–69
    DOI: 10.1038/s41586-018-0466-7
  • Zhou, Y.; Li, W.; Wang, M.; Zhang, X.; Zhang, H.; Tong, X.; Xiao, Y.. "Competitive profiling of celastrol targets in human cervical cancer HeLa cells via quantitative chemical proteomics". Molecular BioSystems (2017), 13(1): 83–91
    DOI: 10.1039/c6mb00691d